Приказ о дезинфекции

Приказ МЗ РБ №165 от 25.11.2002г. МЗ Республики Беларусь

  1. Беларусь в годы первой мировой войны.
  2. Бюджетный дефицит и государственный долг: причины и виды, социально- экономические последствия. Проблемы бюджетного дефицита и государственного долга в Республике Беларусь.
  3. В чем состоят преимущества и недостатки парламентско-президентской республики?
  4. Взыскание алиментов по судебному приказу.
  5. Внутриполитический кризис во Франции в к. 50-х гг. ХХ в. Установление Пятой Республики. Конституция 1958 г.
  6. Вопрос 12. Приказ МЗ РБ от 21.10.2003 № 165 «Об утверждении Правил внешнего и внутреннего содержания организаций здравоохранения Республики Беларусь».
  7. Вопрос 16. Приказ МЗ РБ от 22.02.1999 № 64 «О совершенствовании мероприятий по профилактике заболеваний людей бешенством».
  8. Вопрос 27. Хозяйственные связи по поставкам товаров для государственных нужд в Республике Беларусь
  9. Вопрос 51. Социально-экономическое развитие и государственный строй ранней Римской республики.
  10. Вопрос 58.Состояние потребительского рынка в Республике Беларусь

«О проведении дезинфекции и стерилизации учреждениями здравоохранения»

1.Дезинфекция ИМН: определение, методы.

Дезинфекция – уничтожение патогенных и условно-патогенных микроорганизмов, вирусов ( в т.ч.возбудителей парентеральных вирусных гепатитов, ВИЧ-инфекция), вегетативных бактерий (включая микобактерии туберкулёза), грибов. Дезинфекции подлежат все изделия после применения их у пациентов. После дезинфекции изделия промывают водопроводной водой, высушивают и применяют по назначению или подвергают предстерилизационной очистке (ПСО) и стерилизации.

Физический метод дезинфекции:

— способом кипячения в дистиллированной воде (30 мин) или в воде с добавлением натрия двууглекислого (сода пищевая) (15 мин.) — изделия из стекла, металлов, термостойких полимерных материалов и резин. Требуется предварительная очистка. Отсчёт времени дезинфекционной выдержки начинают с момента закипания воды.

— паровым методом в паровом стерилизатороре (автоклаве) (110 оС, МПа 0,5 кгс/см2), 20 мин — изделия из стекла, металлов, резин, латекса, термостойких полимерных материалов. Предварительная очистка изделий не требуется. Дезинфекция осуществляется воздействием водяного насыщенного пара под избыточным давлением.

— воздушным методом – осуществляют изделия из стекла, металлов, силиконовой резины и проводят в открытом виде на полках воздушного стерилизатора. Этим методом можно дезинфицировать только изделия, не загрязненные органическим и веществами (ввиду их пригорания к поверхности изделий).

Химический метод дезинфекции является более распространенным и общепринятым методом обеззараживания изделий медназначения в ЛПУ. Дезинфекцию с использованием химических средств проводят способом погружения изделий в раствор сразу после применения, не допуская их подсушивания. Разъёмные изделия дезинфицируют в разобранном виде. Каналы и полости изделий заполняют дезинфицирующим раствором. При видимом загрязнении изделий медназначения биологическим субстратами и во избежание снижения эффективности действия рабочих растворов дезсредства рекомендуется проведение предварительного промывания водопроводной водой или раствором дезсредства в специально выделенной ёмкости. Промывные воды дезинфицируются в последующим одним из методов по режиму для вирусных гепатитов. Рекомендуется использовать специальные ёмкости (полимерные контейнеры с крышками, в которых изделия размещают на специальных перфорированных решетках) для удобства дальнейшей обработки.

По окончании дезинфекционной выдержки изделия промывают проточной водой.

2.Химическая очистка мединструментария.

Химическая очистка хирургических инструментов из нержавеющей стали

х Для скальпелей из нержавеющей стали.

хх Для инструментов с наличием оксидной пленки.

ххх Для инструментов с сильными коррозионными поражениями, места поражений рекомендуется дополнительно очищать ершом или ватно-марлевым тампоном.

3. Особенности дезинфекции мединструментария, имеющего каналы, полости, оптику.

Каналы и полости изделий заполняют дезинфицирующим раствором.

При выборе средств очистки, дезинфекции медицинских изделий с оптикой следует учитывать рекомендации изготовителей, касающиеся воздействия конкретных средств на материалы этих изделий.

4. Режимы дезинфекции при применении различных дезсредств.

Для дезинфекции используются средства разрешенные Министерством Здравоохранения Республики Беларусь по прилагаемой инструкции.

5. Предстерилизационная обработка мединструментария: методика приготовления и постановки пробы, контроль качества ПСО.

Предстерилизационная очистка проходит поэтапно.

1 этап – замачивание в моющем растворе при полном погружении (температура не менее 20 оС, время – согласно инструкции раствора).

2 этап – мойка в том же растворе, в котором проводили замачивание, при помощи ерша, ватно-марлевого тампона не менее 30 сек.

3 этап – ополаскивание питьевой проточной водой не менее 1 мин.

4 этап – ополаскивание дистиллированной водой – время не нормируется.

5 этап – сушка горячим воздухом (t 85 градусов) до полного исчезновения влаги.

Контроль качества ПСО – азопирамовая проба.

Перед проверкой качества ПСО обработки материалов раствор Азопирам смешивают с равным количеством 3% перекиси водорода (1:1). Этим раствором обрабатывают исследуемые материалы: протирают тампонами, заполняют шприцы, иглы.

В присутствии следов крови немедленно или не позже, чем через 1 мин., появляется окрашивание, вначале фиолетово-синее, быстро переходящее в сиренево-пурпурное или буроватое.

Окрашивание, наступившее позже, чем через 1 мин., не учитывается. Рабочий раствор годен в течение 1-2 часов.

Методика приготовления реактивов для постановки пробы

Азопирамовая проба.

Приготовление исходного раствора. Для приготовления 1 л (куб.дм) исходного раствора азопирама отвешивают 100 г амидопирина и 1,0 — 1,5 г солянокислого анилина, смешивают их в сухой мерной посуде и доводят до объема 1 л (куб.дм) 95-процентным этиловым спиртом. Смесь тщательно перемешивают до полного растворения ингредиентов.

Исходный раствор азопирама следует хранить в плотно закрытом флаконе в темноте. Допустимый срок хранения исходного раствора азопирама составляет: при температуре 4 град. C (в холодильнике) — 2 месяца; при комнатной температуре (20 +/- 2 град. C) — не более 1 месяца. Умеренное пожелтение исходного раствора без выпадения осадка в процессе хранения не снижает рабочих свойств раствора.

Реактив азопирам можно хранить не более 2 часов. При более длительном стоянии может появиться спонтанное розовое окрашивание реактива. При температуре выше +25 град. C раствор розовеет быстрее, поэтому его необходимо использовать в течение 30 — 40 мин. Не следует подвергать проверке горячие инструменты, а также хранить реактив азопирам на ярком свету и вблизи нагревательных приборов.

В случае необходимости пригодность реактива азопирам проверяют следующим образом: 2 — 3 капли реактива наносят на пятно крови. Если не позже чем через 1 мин появляется фиолетовое окрашивание, переходящее затем в сиреневый цвет, реактив пригоден к употреблению, если окрашивание в течение 1 мин не появляется, реактивом пользоваться не следует.

Методика постановки пробы

Контролируемое изделие протирают марлевой салфеткой, смоченной реактивом, или наносят 2 — 3 капли реактива на изделие с помощью пипетки.

В шприцы вносят 3 — 4 капли рабочего раствора реактива и несколько раз продвигают поршнем для того, чтобы смочить реактивом внутреннюю поверхность шприца, особенно места соединения стекла с металлом, где чаще всего остается кровь, реактив оставляют в шприце на 1 мин, а затем вытесняют на марлевую салфетку. При проверке качества очистки игл реактив набирают в чистый, не имеющий следов коррозии шприц. Последовательно меняя иглы, через них пропускают реактив, вытесняя 3 — 4 капли на марлевую салфетку.

Качество очистки катетеров и других полых изделий оценивают путем введения реактива внутрь изделия с помощью чистого шприца или пипетки. Реактив оставляют внутри изделия на 1 мин, после чего сливают на марлевую салфетку. Количество реактива, вносимого внутрь изделия, зависит от его величины.

Учет результатов постановки пробы

При положительной азопирамовой пробе в присутствии следов крови немедленно или не позднее чем через 1 мин появляется вначале фиолетовое, затем быстро, в течение нескольких секунд, переходящее в розово-сиреневое или буроватое окрашивание реактива.

Азопирам, кроме гемоглобина, выявляет наличие на изделиях остаточных количеств:

— пероксидаз растительного происхождения (растительных остатков);

— окислителей (хлорамина, хлорной извести, стирального порошка с отбеливателем, хромовой смеси для обработки посуды и др.);

— ржавчины (окислов и солей железа);

— кислот.

При наличии на исследуемых изделиях ржавчины и указанных окислителей наблюдается бурое окрашивание реактива, в остальных случаях происходит окрашивание в розово-сиреневый цвет.

При постановке азопирамовой пробы окрашивание реактива, наступившее позже чем через 1 мин после постановки пробы, не учитывается.

Результаты контроля отражают в журнале по форме N 366/у (табл. 9).

Контроль качества предстерилизационной очистки проводят специалисты территориальных санитарно-эпидемиологических учреждений в зависимости от эпидзначимости медучреждения и конкретной эпидситуации.

Самоконтроль в ЛПУ проводят: в централизованных стерилизационных (ЦС) ежедневно, в отделениях — не реже 1 раза в неделю; организует и контролирует его старшая медицинская сестра (акушерка) отделения, главная медсестра — 1 раз в месяц.

Контролю подлежит: в ЦС — 1% от каждого наименования изделий, обработанных за смену, в отделениях — 1% одновременно обработанных изделий каждого наименования, но не менее 3 единиц.

Качество предстерилизационной очистки изделий оценивают путем постановки азопирамовой пробы (на наличие остаточных количеств крови).

6. Стерилизация. Методы, режимы стерилизации. Выбор режима стерилизации для различных видов мединструментария.

Стерилизация – умерщвление всех патогенных и непатогенных микроорганизмов, в том числе и их споровых форм.

Стерилизацию осуществляют физическими (паровой, воздушный, в среде нагретых шариков) и химическими (применение растворов химических средств, газовый) методами. Выбор адекватного метода стерилизации зависит от особенностей стерилизуемых изделий.

Стерилизация паровым методом (водяной насыщенный пар под избыточным давлением)

130-134°С. 2,0 20 мин. Изделия из коррозионно-стойких металлов, стекла изделия из текстильных материалов резин, лигатурный шовный материал

120—122°С. 1,1 45 мин. Изделия из резин, отдельных видов пластмасс (полиэтилен высокой плотности, ПВХ-пластикаты), лигатурный шовный материал

Стерилизация воздушным методом (сухой горячий воздух)

При воздушном методе стерилизации стерилизующим средством является сухой горячий воздух температурой 160°С – 150 мин и 180°С – 60 мин; стерилизацию осуществляют в воз­душных стерилизаторах стерилизуют изделия из металла, стекла и резины на основе силиконового каучука.

Стерилизация растворами химических средств.

Стерилизация изделий растворами химических средств является вспомога­тельным методом, поскольку не позволяет простерилизовать их в упаковке, а по окон­чании стерилизации необходимо промыть изделия стерильной жидкостью (питьевая вода, 0,9% раствор натрия хлорида), что при нарушении правил асептики может при­вести к вторичному обсеменению (контаминации) простерилизованных изделий мик­роорганизмами.

Данный метод следует применять для стерилизации изделий, в конструкцию ко­торых входят термолабильные материалы, то есть когда особенности материалов изде­лий не позволяют использовать другие рекомендуемые методы стерилизации (физиче­ские). Конструкция изделия должна позволять стерилизовать его растворами химиче­ских средств. При этом необходим хороший доступ стерилизующего средства и про­мывной жидкости ко всем стерилизуемым поверхностям изделия.

Для стерилизации изделий растворами химических средств используют средства, разрешенные к применению для данной цели по режимам согласно инструк­тивно-методическим документам, утвержденным в установленном порядке Минздра­вом Республики Беларусь,

При стерилизации растворами химических средств используют стериль­ные емкости из стекла, металлов, термостойких пластмасс, выдерживающих стерили­зацию паровым методом, или покрытые эмалью (эмаль без повреждений).

Стерилизация газовым методом

Для газового метода стерилизации используют смесь ОБ (смесь окиси этилена и бромистого метила в весовом соотношении 1:2,5 соответственно), окись этилена, пары раствора формальдегида в этиловом спирте.

Дата добавления: 2015-04-18; просмотров: 371; Нарушение авторских прав

| следующая лекция ==>
Вопрос 12. Приказ МЗ РБ от 21.10.2003 № 165 «Об утверждении Правил внешнего и внутреннего содержания организаций здравоохранения Республики Беларусь». | Требования к проведению санитарно-противоэпидемических мероприятий в период эпидемического подъема заболеваемости гриппом.

Выдержка), применение. Приказ №165 МЗ РБ.

Дезинфекция — это уничтожение патогенных и условно-патогенных микроорганизмов, вирусов вегетативных бактерий игрибов на всех изделиях после применения их у пациентов.

Проводится дезинфекция с целью профилактики внутрибольничных инфекций у пациентов иперсонала лечебно-профилактических учреждений. Дезинфекцию осуществляют физическим и химическим методом. Выбор метода зависит от особенностей изделия и его назначения.

Дезинфекцию с использованием физического метода выполняют : кипячением изделий в дистиллированной воде в течение 30 минут, и с добавление 2% натрия двууглекислого (сода пищевая) 15 минут в данном случае можно кипятить изделия из стекла, металла, термостойких полимерных материалов и резины. Перед кипячение изделия очищают от биологических загрязнений.

Паровым методом дезинфицируют такие же изделия из стекла, металлов, резины, термостойких полимерных материалов водяным насыщенным паром под давлением 0.5 атмосферы при t 110°С- 20 минут.

Предварительная очистка изделий не требуется, так как после дезинфекции изделия подлежат утилизации. Хорошо использовать данный метод для медицинских изделий однократного применения.

Дезинфекцию воздушным методом осуществляют для изделии из стекла, металлов, силиконовой резины при температуре 120о С- 45минут. При данном методе необходимо изделия предварительно отмыть, так как органические вещества пригорят к поверхности изделий. . . |

Химический метод является наиболее распространенным в ЛПЦ. Дезинфекцию с использованием химических веществ проводят способом полного погружения изделий в раствор в разобранном виде, заполняя дезраствором полости и каналы. При данной методе необходимо предварительное отмывание изделий от биологических загрязнений во избежание снижения эффективности действия рабочего раствора дезсредства. При дезинфекции химическим методом необходимо использовать специальные емкости с крышками, для минимального воздействия химических растворов на медперсонал.

Химическую дезинфекцию поводят погружением, протиранием, орошением.

№20 ПСО. Цель проведения. Состав растворов, температурный режим, экспозиции, кратность использования. Ополаскивание, режим сушки.

ПСО изделий медназначения проводят после их дезинфекции и последующего отмывания остатков дезинфицирующих средств под проточной водой.

ПСО должны подвергаться все изделия перед стерилизацией с целью удаления белковых, жировых, механических загрязнений, а так же лекарственных средств.

Все разъемные изделия должны подвергаться ПСО в разобранном виде.

Для ПСО используются физические и химические средства, разрешенные к использованию в РБ согласно инструкциям по применению, разрешенные Минздравом.

ПСО проводят ручным и механизированным способом.

Методика ПСО механизированным способом должна осуществляться по инструкции, прилагаемой к. конкретному оборудованию.

Для методики ПСО ручным способом используют емкости из пластмассы, стекла или покрытых эмалью (без повреждений), а так же растворы содержащие перекись водорода, медицинскую или техническую (марки А и В) и моющие средства (лотос, лотос автомат, остра, виксан-мед, прогресс). При использовании моющего средства «Лотос» и «Лотос-автомат» необходимо использовать ингибитор коррозии- 0.14% раствор олеата натрия.

Для проведения ПО ручным способом необходимо приготовить моющий раствор: Раствор 27.5% перекись водорода-17см3. Моющее средство («Прогресс», «Айна», «Астра», «Лотос») -5грамм. Вода питьевая O.78см3 — количество компонентов для приготовления одного литра моющего раствора.

— погружение изделий в моющий раствор при темп. 50 ° на 15 минут

— мойка каждого изделия в моющем растворе при помощи ерша или ватно-марлевого тампона от 0,5-1мин.

-ополаскивание под проточной водой при применении моющего средства:

» Биолор» 3 минуты, «Прогресс» 5 минут, «Астрал, «Логос», «Айна» 10 минут.

-ополаскивание в дистиллированной воде от 0.5-1 минут.

— сушка горячим воздухом при темп. 85оС в сушильном шкафу до полного исчезновения влаги.

— моющий раствор перекиси водорода с синтетическим моющим средством можно использовать в течение суток до загрязнения (появление розового цвета) и подогревать неизмененный раствор можно до 6 раз.

Совмещение дезинфекции и ПСО в одном этапе позволяет упростить обработку инструментов, уменьшить количество емкостей, сократить, время обработки. При использовании растворов совмещающих дезинфекцию и ПСО необходимо строго следовать методическому документу по применению конкретного средства.

№ 21 .Контроль качества предстерилизационной очистки изделий медицинского назначения. Цель. Кратность проведения контроля. (Приказ №165 от 25.11.2002г.M3 РБ «О проведении дезинфекции и стерилизации учреждениями здравоохранения»).

Контроль качества ПСО проводи специалисты территориальных санитарно-эпидемиологических учреждений в зависимости от эпидзначимости медучреждения и конкретной эпидситуации.

Самоконтроль в ЛПУ проводят:

— в ЦСО еженедельно;

— в отделениях не реже одного раза в неделю, организует и контролирует его старшая медсестра отделения, главная медсестра 1 раз в месяц.

ПСО изделий медназначения проводят после их дезинфекция и последующего отмывания остатков дезинфицирующих средств под проточной водой.

ПСО должны подвергаться все изделия перед стерилизацией с целью удаления белковых, жировых, механических загрязнений, а так же лекарственных средств.

№22. Азопирамовая проба. Методика постановки. Количество тестируемого материала. Время тестирования. Действия при положительной пробе. Учет результатов постановки пробы.

Азопирамовая проба.

Для приготовления исходного раствора берут 100 г амидопирина и 1.0-1.5 г

солянокислого анилина, смешивают их в сухой мерной посуде и доводят до

1 л 95° «этиловым спиртом, смесь тщательно перемешивают до полного растворения ингредиентов. Хранят в плотно закрытом флаконе в темноте, при t 4°С- 2 месяца, при t 20+-2°С не более 1 месяца. Умеренное пожелтение исходного раствора без выпадения осадка и процессе хранения не снижает рабочих свойств раствора. Перед постановкой пробы готовят реактив азопирам, для этого смешивают в равных объемах исходный раствор и3% перекись водорода. Хранят не более 2 часов, при более длительном стоянии

появится спонтанное розовое окрашивание реактива. Контролируемое изделие протирают марлевой салфеткой смоченной реактивом, или наносят 2-3 капли реактива на изделие с помощью пипетки, качество очистки полых предметов оценивают путем введения реактива внутрь изделия с помощью чистого шприца или пипетки. Реактив оставляют внутри изделия 1 минуту, после чего сливают на марлевую салфетку.

Контролю подлежат: в ЦСО-1% от каждого наименования изделий, обработанных за смену, в отделениях-1% одновременно обработанных изделий каждого наименования, но не менее 3-х единиц.

Результат постановки азопираиовой пробы оценивается через 1 минуту.

При контакте реактива с загрязненным участком появляется фиолетовое окрашивание, быстро, в течение нескольких секунд, переходящее в розово-сиреневое или буроватое.

Азопирам выявляет наличие гемоглобина, пероксидаз, окислителен (хлорамин, хлорная известь, стиральные порошки с отбеливателем), а также ржавчины.

Буроватое окрашивание наблюдается при наличии ржавчины и хлорсодержащих окислителей. В остальных случаях окрашивание розово-сиреневое.

При постановке азопирамровой пробы окрашивание реактива, наступившее позже чем через 1 минуту после постановки пробы, не учитывается.

Исследуемые изделия должны иметь комнатную температуру (не выше 25°С)

При положительных пробах вся партия инструментария подлежит повторной обработке до получения отрицательных проб.

№23. Стерилизация. Определение. Методы. Режимы.

Стерилизация-это умерщвление всех патогенных и непатогенных микроорганизмов, в том числе их споровых форм. Стерилизация подлежат все изделия, соприкасающиеся с раневой поверхностью, контактирующие с кровью в организме пациента или вводимой в него, инъекционными препаратами, а так же изделия, которые 8 процессе эксплуатации

контактируют со слизистой оболочкой и могу вызвать ее повреждение.

Стерилизация проводится после дезинфекции и ПСО и является завершающим этапом обработки изделий медназначения.

Стерилизацию осуществляют физическим (паровым, воздушный, в среде нагретых шариков) и химическим (применение растворов химических средств, газовый) методами. Выбор метода зависит от особенности стерилизуемых изделий.

При паровом методе стерилизации стерилизующим средством является водяной насыщенный пар под избыточным давлением 2 атм.-+(0.2) t 132°+-2°20 минут (+-2 минуты) при таком режиме стерилизуют общие хирургические инструменты, специальные детали приборов и аппаратов из хоррозийностойких металлов, стекла, хирургическое белье, перевязочный материал в стерилизационных коробках.

Хирургические белье и перевязочный материал укладывают в стерилизационные коробки параллельно движению пара.

Резиновые изделия (перчатки, трубки, катетеры, зонды и т.д.), шовный материал стерилизуют при 1.1 атм.(+-0.2) t 120оС(+-2°) 45 минут(+-3 минуты).

При воздушном методе стерилизации осуществляется стерилизация сухим горячим воздухом при t 180аС (+-2-10°) 60 минут (+5мннуг>,t 160 (+-2-10°) 150 минут (+-5 минут) в воздушных стерилизаторах.

Воздушным методам стерилизуют изделия из металлов, в том числе и каррозионно-нестойких, стекла (шприцы с пометкой 200оС), инъекционные иглы, изделия силиконовой резины.

Стерилизуемые изделия равномерно укладывают горизонтально поперек полок, не допуская перекрытия продувочных окон и решетки вентиляции Объемные изделия следует класть на верхнюю металлическую решетку, чтобы они не препятствовали потоку горячего воздуха. Изделия стерилизуют завернутыми в стерилизационные упаковочные материалы или в открытой виде, загружая стерилизационную камеру на 70% объема. В стерилизаторах стерилизующий средством в которых является среда нагретых стеклянных шариков (гласперленовые шариковые стерилизаторы), стерилизуют изделии применяемые в стоматологии (боры, зонды и т.д.). Изделия стерилизуют по режимам, указанным в инструкции но эксплуатации конкретного стерилизатора, разрешенного дли применения.

Стерилизацию растворами химических веществ следует применять для стерилизации изделий из термолабильных материалов, когда невозможно применить другой метод стерилизация. Для стерилизации изделий растворами химических средств, использую вещества, разрешенные к применению для данной цели по режимам согласно инструктивно- методическим документам, утвержденным в установленном порядке МЗ РБ.

При стерилизации растворами химических веществ используются стерильные емкости из стекла, металла, термостойких пластмасов, выдерживающих стерилизацию паровым методом, или покрытых эмалью (без повреждения).

Стерилизацию проводят ври полной погружении изделия в раствор, свободно их раскладывая, длинные изделия укладывают по спирали, заполняя раствором каналы и полости.

Для газового метода стерилизации используется смесь окиси этилена и бромистого метила в соотношении 1:2:5 и пары раствора формальдегида в этиловом спирте).

№24. Сроки сохранения стерильности материала в зависимости от

Упаковки.

Паровой метод.

Срок сохранения стерильности изделий, простерилизованных в герметичной упаковке и пергаменте, бумаге мешочной пропитанной, бумаге мешочной влагопрочной, бумаге упаковочной высокопрочной, бумаге крепированной, стерилизационной коробке с фильтром- 20 суток, в любой негерметичной упаковке и стерилизационной коробке без фильтра — 3 суток.

Кратность использования пергамента, бумаги мешочной непропитанной, бумаги мешочной влагопрочной и бумаги крепированной — до 2-х раз, крафт- бумаги- до 3-х раз (учетом целостности).

Воздушный метод.

Изделия, простерилизационные без упаковки, помещают на «стерильный стол» и использую в течение одной рабочей смены.

Срок сохранения изделий, простерилизационных и герметично упакован в бумагу упаковочную высокопрочную, бумагу крепированную- 20 суток. Кратность использования бумаги мешочной влагосрочной, бумаги крепированной — до 2-х раз, бумаги упаковочной высокопрочной — до 3-х раз.

Срок сохранении стерильности изделий, простерилизованных в крафт-бумаге-3 суток, кратность использования ее — до 3-х раз.

Стерилизация растворами химических веществ.

Промытые стерильные изделия после удаления остатков жидкости из каналов и полостей используют сразу по назначению или помещают на хранение в стерильную коробку, выложенную стерильной простыней, на срок не более 3-х суток.

Газовый метод.

Изделия, простерилизованные смесью ОБ или окисью этилена, применяют после их выдержке ввентилируемом помещении в течение:

— 1 суток — для изделий из стекла, металла

— 5-13 суток — для изделий то полимерных металлов, имеющих кратковременный контакт (до 30 икнут).

— 14 суток — для всех изделий, имеющих длительный контакт (свыше 30 минут) со слизистыми оболочками, тканями, кровью.

— 21 сутки — для изделий из полимерных материалов, имеющих длительный контакт (свыше 30 минут), используемых для детей.

№ 25 С какой целью проводят стерилизацию? Какие изделия подвергаются стерилизации?

Стерилизации изделий проводят с целью уничтожения микроорганизмов всех видов, в том числе споровых форм.

Стерилизации подлежат все изделия, соприкасающиеся с раневой поверхностью, контактирующие с кровью в организме пациента или вводимой в него, инъекционными препаратами, а так же изделия, которые в процессе эксплуатации контактируют со слизистой оболочкой и могут вызывать ее повреждение.

№ 26. Контроль стерилизации. Физические, химические, биологические методы. Химические индикаторы различных типов (наружные, внутренние, мультипараметрические интеграторы): наименование, количество, расположение. Методические указания МЗ РБ № 90-9908 «Контроль качества стерилизации изделий медицинского назначения».

Контроль качества стерилизации проводится с целью оценки эффективности процесса стерилизации и предусматривает:

— совместное использование различных методов контроля;
— анализ полученных данных;

— протоколирование результатов (на месте проведения процесса стерилизации);

— принятие решения в отношении простерилизованных изделий (применяется непосредственно на рабочих местах).

Для контроля стерилизационного процесса используются физический, биологический, химический методы:

— физический метод предусматривает контроль параметров работы стерилизационного оборудования (таймеры, датчики температуры, давления, относительной влажности и др.). Контроль производится ежедневно при каждом цикле стерилизации оператором, который обслуживает стерилизационное оборудование. Данный цикл контроля позволяет оперативно выявить и устранить недостатки в работе стерилизационного оборудования. Однако данный метод контроля позволяет оценить действие параметров внутри камеры стерилизационного оборудования, но не внутри стерилизуемых упаковок.

— химический метод контроля позволяет оперативно оценить одно или несколько действующих параметров стерилизационного цикли, производятся ежедневно при каждом цикле стерилизации. Химический метод контроля ислользует химические индикаторы, принцип действия которых основан на изменении агрегатного состояния индикаторного вещества или цвета индикаторной краски при действии определенных параметров стерилизации. Каждый тип индикатора зависят от метода и режима стерилизации.

— биологический метод контроля основан на гибели, споровых форм тест-культур, специфичных для каждого метода стерилизации, предназначен для оценки состояния стерильности изделий и материалов. Биологический метод подтверждает эффективность выбранного режима стерилизации.

При химическом методе контроля используемые химические индикаторы имеют свою классификацию: попринципу размещения — наружные и внутренние.

Наружные индикаторы (ленты,наклейки) крепятся липким слоем па поверхность используемых упаковок (бумага, стекло, металл и др.) И потом удаляются. Наружным индикатором могут быть упаковочные пакеты, которые на своей поверхности содержат химический индикатор.

Внутренние индикаторы размещаются внутри упаковок со стерилизуемым материалом вне зависимости от ее вида (пакеты бумажные или пластиковые, металлические контейнеры и др.). К ним относятся различные виды бумажных индикаторных полосок, содержащие на своей поверхности индикаторную краску.

В зависимости от количества контролируемых параметров стерилизационного цикла различают несколько классов химических индикаторов. Чем выше класс индикатора, тем больше параметров стерилизационного цикла он контролирует, и тем выше вероятность получения стерильных материалов при их

1класс. Индикаторы процесса стерилизации — это наружные индикаторы, используемые на индивидуальных упаковках со стерилизуемым материалом. Они позволяют сделать заключение о том, что данная упаковка прошла или не прошла цикл стерилизации.

2класс. Индикатор одной переменной — предназначен для контроля только одного из действующего фактора стерилизации (например, достижение температуры, концентрации газа и т. д.).

3 класс. Мультипараметрические индикаторы — предназначены для оценки действия двух и более факторов стерилизационного цикла. Нанесенная па их поверхности индикаторная краска изменяет свой цвет только при одновременном действии нескольких параметров (например: температура и экспозиция, температура, экспозиция и насыщенность пара а т. д.).

4 класс. Интеграторы — химические индикаторы, которые являются аналогами биологических и разработаны для использовании в любых режимах парового или газового методов стерилизации и контролируют одновременно действие всех параметров выбранного метода стерилизации. Принцип действия интеграторов основан на том, что скорость плавления химического вещества идентична скорости гибели споровых форм бактерий, являющихся тестовыми в биологических индикаторах.

Преимущество индикаторов в том, что расшифровка результатов производится непосредственно после окончания цикла стерилизациии позволяет сделать заключение о стерильности или нестерильности материалов.

В зависимости от метода стерилизации должна правильно проводиться размещение химических индикаторов не стерилизуемых объектах.

При паровом методе стерилизации:

— наружный индикатор — одна полоска пли лента длиной 6-7 см. крепится на каждую упаковку стерилизуемого материала.

— внутренний индикатор вкладывается в каждую стерилизуемую упаковку внутрь, а при использовании металлических контейнеров (баксов) — в центре или на дне каждого.

При воздушном методе стерилизации: открытом — наружный индикатор не используется, а при закрытом — наружный индикатор — полоска или отрезок ленты крепится на каждую упаковку.

При открытом воздушном методе стерилизации одна индикаторная полоска внутреннего индикатора ложится в центре; ври закрытом методе воздушной стерилизации одна индикаторная полоска внутреннего индикатора вкладывается внутри каждой упаковки.

При газовом методе стерилизации с использованием этилен-оксида наружный индикатор в виде этикетки или отрезка индикаторной ленты крепится на каждую упаковку или используется упаковочный материал с нанесенным индикатором: внутренний индикатор ввиде одной индикаторной полоски вкладывается внутрь каждой упаковки.

При газовом методе стерилизации с использованием пароформалина, необходимо использовать упаковочный материал с нанесенным индикатором; внутренний индикатор в виде одной полоски вкладывается внутрь каждой упаковки.

Все виды химических индикаторов должны применяться в соответствии с инструкцией по их применению, утвержденной Министерством здравоохранения Республики Беларусь.

№ 27 Понятие о гигиенической и хирургической антисептике рук медперсонала в соответствии с требованиями Евростандарта EN1500.

Гигиеническая антисептика рук предусматривает удаление или уничтожение транзиторной популяция микроорганизмов.

Показания к гигиенической антисептике рук:

· до и после контакта с инфекционным больным известной или предполагаемой этиологии;

· контакт с выделениями больных (гной, кровь, мокрота и др.);

· до и после мануальных и инструментальных исследований и вмешательств, не связанных с проникновением в стерильные полости;

· после посещения бокса в инфекционных стационарах и отделениях;

· после посещения туалета;

· перед уходом домой.

Оставить комментарий

Ваш e-mail не будет опубликован. Обязательные поля помечены *